domingo, 17 de mayo de 2009

Investigacion N° 5 2Lm Roldán Gómez Jessica Elizabeth

-Investigar los signos y sintomas de las distintas infecciones:

Salmonelosis: Los signos y síntomas de una infección por salmonela aparecen generalmente 12 a 72 horas después de que los microbios entran en su cuerpo. Usted puede tener cualquiera de lo siguiente:
· Dolor tipo cólico en el abdomen (estómago).
·Diarrea (evacuaciones flojas) que pueden tener
sangre.
·Fiebre o dolor de cabeza.
·Náusea (malestar estomacal) o vomito (devolver).
·Pérdida de peso o deshidratación (perder demasiado líquido).

Tifoidea: La fiebre tifoidea esta caracterizada por fiebre alta constante (40º), sudoración profusa, gastroenteritis y diarrea. Menos comúnmente puede aparecer un sarpullido de manchas aplanadas de color rosáceo. Tradicionalmente se divide en cuatro fases, durando cada una de ellas una semana aproximadamente.
Primera semana: Durante esta fase sube lentamente la temperatura con una bradicardia relativa, malestar general, dolor de cabeza y tos. Se ha observado Epistaxis en una cuarta parte de los casos. Hay leucopenia con eosinopenia y linfocitosis relativa.
Segunda semana: Durante esta fase se produce la postración. Llegando la fiebre al culmen de los 40º C. Hay bradicardia con un pulso dicrótico. El delirio es frecuente (este delirio le da a la Fiebre Tifoidea el nombre de fiebre nerviosa). En un tercio de los pacientes se han observado puntos rojos en la parte inferior del pecho y abdomen. Hay respiración agitada. El abdomen esta distendido y dolorido en cuadrante derecho inferior. La diarrea puede también ocurrir en esta fase (6 - 8 deposiciones por día), de apariencia verde y olor característico con apariencia de puré de guisantes. No obstante el estreñimiento también es frecuente. El Bazo e hígado están inflamados con un aumento del nivel de transaminasas.
Tercera semana: En esta semana si la fiebre tifoidea no se trata, las complicaciones son frecuentes: Hemorragias Intestinales debidas a la congestión de las Placas de Peyer (serias pero no necesariamente mortales); Perforación intestinal en el Íleon que puede dar lugar a peritonitis abscesos que pueden derivar en encefalitis, colecistitis, y endocarditis. La fiebre es alta.
Finales de Tercera semana/Principios de la cuarta: La temperatura corporal se va restableciendo, pero el debilibitamiento aun persiste.


Brucelosis:
Sintomatología inicial es fiebre, cefalea, dolor vertebral con afectación de las articulaciones sacroilíacas y adenopatías (inflamación de los ganglios) en el 50% de los afectados. En casos más graves puede producir endocarditis y neumonía. La fiebre suele subir durante la noche y disminuir durante el día, con períodos de oscilación (de ahí que se dé el nombre de fiebre ondulante a la enfermedad).
Fuentes de consulta:

viernes, 15 de mayo de 2009

Investigacion N° 4 "Bitacoras" 2Lm Roldán Gómez Jessica Elizabeth

Bitacora de manteniemito correctivo y preventivo

El Mantenimiento Correctivo:Consiste en la reparación de un equipo o máquina cuando se dispone del personal, repuestos, y documentos técnicos necesario para efectuarlo


Bitacora de mantenimiento correctivo


El mantenimiento preventivo: Es un procedimiento periódico para minimizar el riesgo de fallo y asegurar la continua operación de los equipos, logrando de esta manera extender su vida útil.


Bitacora de mantenimiento preventivo










miércoles, 13 de mayo de 2009

Investigacion Nº3 "Tinicion" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Tincion
Los procedimientos que ponen de manifiesto diferencias entre las células bacterianas o en partes una célula se conoce como técnica de coloración diferenciales. Son algo mas que elaboradas que la técnica simple en la que las células se someten a una sola solución colorante o reactivo colorante.
Las tinciones se combinan químicamente con el protoplasma bacteriano; si la célula no ha muerto el proceso termina de hacerlo. El método, por consiguiente, es bastante drástico y puede producir artificios.
Clasificcion de tinciones:
Tincion directa: En una tinción directa el colorante interacciona directamente con el sustrato.

Tinción indirecta: En una tinción indirecta se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia química denominada "mordiente" con el sustrato la cual permite la posterior interacción del colorante. Usualmente los mordientes son sales, hidróxidos o alumbres de metales bivalentes o trivalentes.

Tinción por azul de metileno o cristal violeta: El azul de metileno es un buen colorante simple que actúa sobre todas las células bacterianas rápidamente y que no produce un color tan intenso que oscurezca los detalles celulares. Es especialmente útil para detectar la presencia de bacterias en muestras naturales, puesto que la mayor parte del material no celular no se tiñe.

Tinción de Gram: La tinción de Gram o coloración Gram es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram, que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gram positiva a las bacterias que se visualizan de color violeta y Bacteria Gram negativa a las que se visualizan de color rosa.


Tinción de Ziehl Neelsen: La tinción de Ziehl-Neelsen (BAAR) es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, para la identificación de mocroorganismos patógenos, por ejemplo M. tuberculosis.Fue descrita por primera vez por dos médicos alemanes, Franz Ziehl (1859 to 1926), un bacteriólogo y Friedrich Neelsen (1854 to 1894), un patólogo.Este método se basa en que las paredes celulares de ciertos parásitos y bacterias contienen ácidos grasos (por ejemplo, el ácido micólico) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan bacilos ácido-alcohol resistentes o BAAR. Las micobacterias como M. tuberculosis y M. marinum y los parásitos coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras.



Investigacion Nº2 "Medios de cultivo" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Medios de cultivo

Uno de los sistemas más importantes para la identificación de microorganismos es observar su crecimiento en sustancias alimenticias artificiales preparadas en el laboratorio. El material alimenticio en el que crecen los microorganismos es el Medio de Cultivo y el crecimiento de los microorganismos es el Cultivo. Se han preparado más de 10.000 medios de cultivo diferentes.
Para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo artificial debe reunir una serie de condiciones como son: temperatura, grado de humedad y presión de oxígeno adecuadas, así como un grado correcto de acidez o alcalinidad. Un medio de cultivo debe contener los nutrientes y factores de crecimiento necesarios y debe estar exento de todo microorganismo contaminante.
La mayoría de las bacterias patógenas requieren nutrientes complejos similares en composición a los líquidos orgánicos del cuerpo humano. Por eso, la base de muchos medios de cultivo es una infusión de extractos de carne y Peptona a la que se añadirán otros ingredientes.


Clasificacion de los medios de cultivo:
Según su aspecto físico:
•fosiferoliquidos
• Semi-sólidos
• Sólidos duros o muy duros
Según su uso:
• Selectivos
• Selectivos de enriquecimiento
• Diferenciales
• Para cultivar gérmenes anaerobios
• Para medir potencia de antibióticos
• De transporte en micro
• Para filtración a través de membrana
• Para cultivo de hongos y levaduras
• Para cultivo de protozoarios

Tipos de siembra en los medios de cultivo: Sembrar o inocular es introducir artificialmente una porción de muestra (inóculo) en un medio adecuado, con el fin de iniciar un cultivo microbiano. Luego de sembrado, el medio de cultivo se incuba a una temperatura adecuada para el crecimiento. La siembra puede realizarse en medio líquido, sólido o semisólido, utilizando punta, ansa, hisopo o pipeta estéril.
Cultivo en medio líquido
Habitualmente se realiza en tubos o en matraces. El crecimiento se puede manifestar por enturbiamiento, por formación de velo o película, o por sedimento.
Cultivo en medio sólido
Puede ser en tubos o placas.

Investigacion Nº1 "Paramecium" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Los paramecium
Son protozoos ciliados con forma de suela se zapato, habituales en aguas dulces estancadas con abundante materia orgánica como charcos y estanques.
El tamaño ordinario de todas las especies de paramecios es de apenas 0’05mm.
Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente por fisión binaria, se alimentan de bacterias y otros microorganismos microscópicos y para atraparlos utilizan una boca en forma de ranura.

-Características de los siguientes microorganismos pertenecientes al grupo de las enterobacterias:

Escherichia Coli: Organismo procarionte, que trata de un bacteria que se encuentra generalmente en los intestinos animales y por ende en las aguas negras. Principal organismos anaerobio facultativo del sistema digestivo.
La bacteria no adquiere elementos genéticos que codifican factores virulentos. La Escherichia coli O157:H7 es una de cientos de cepas de la E. coli. Aunque la mayoría de las cepas son inocuas y viven en los intestinos de los seres humanos y animales saludables, esta cepa produce una potente toxina y puede ocasionar enfermedades graves como el Síndrome urémico hemolitico.




Salmonella: Es un género de bacteria que pertenece a la familia Enterobacteriaceae, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.
Es un agente zoonótico de distribución universal. Se transmite por contacto directo o contaminación cruzada durante la manipulación, en el procesado de alimentos o en el hogar, también por vía sexual.
Algunas salmonellas son comunes en la piel de tortugas y de muchos reptiles, lo cual puede ser importante cuando se manipulan a la vez este tipo de mascotas y alimentos.

Proteus: es un genero de bacterias gramnegativas, que incluye patógenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario. Las especies de Proteus normalmente no fermentan lactosa por razón de tener una β galactosidasa, pero algunas se han mostrado capaces de hacerlo en el test TSI (Triple Sugar Iron). Son oxidasa-negativas y ureasa-positivas. Algunas especies son mótiles. Tienden a ser organismos pleomórficos, no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa. Con la excepción de P. mirabilis, todos los Proteus reaccionan negativos con la prueba del indol .
Brucella abortus: es una bacteria Gram negativa con un lipopolisacárido (LPS) fuertemente inmunodominante, el que junto con la capacidad de sobrevivir en el interior de células fagocíticas constituyen sus principales factores de virulencia. La infección en humanos conduce a una enfermedad con tendencia a la cronicidad, con fiebre y malestar recurrentes que deterioran su calidad de vida y que además puede presentar complicaciones como artritis, meningitis, entre otras.
En el ganado bovino la bacteria se ubica en la placenta y órganos reproductores por su afinidad por el eritritol. La respuesta inmune frente a B. abortus, patógeno intracelular facultativo, depende principalmente de la activación de la inmunidad mediada por células, con la participación de células T CD4+ de tipo Th1, que secretan interferón gama (INF-γ), citoquina que estimula tanto la actividad bactericida de macrófagos como la actividad citotóxica de los linfocitos T CD8+. Estos últimos son capaces entonces de destruir células infectadas con Brucella.

Clase Nº 2 Practica Nº 9 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Practica Nº 9

-Centrifuga:

-Placa de porcelana excavada

-Pipeta Pasteur

-Lóbulo

-Palillos de madera

-Torundas de algodón alcoholizado


-Micro centrifuga

-Papel secante

Reactivo: Tipificadores, gradilla, prueba de aglutinación en sangre, reactivo de Write, pipetas.

Clase Nº 2 Practica Nº 8 "Aglutinacion" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Practica Nº 8 "Aglutinacion"
Materiales:
-Lamina de cristal para reacciones febriles
-tubo de ensaye con tapón rojo estéril
-palillos de madera
-torundas de algodón alcoholizado
-cetrifuga
-microscopio
-pipeta Pasteur
-papel secante
-papel para vestir mesa de laboratorio


Reactivo: Febriclin, paciente "sangre fresca", torniquete, hoja de solicitud de examen de laboratorio, hoja de indicaciones para el paciente. folio de registro.

Análisis: Técnica de extracción de sangre "Venopuncion", separación de paquete sanguíneo, punteo de plasma en placa de cristal, mezclar plasma con reactivo de febriclin para observar la función de aglutinación, Observar microscopicamente el proceso de aglutinación en objetivo 10x y 40x, reportar en hoja de laboratorio.

Clase 1.- Practica Nº1 "Operar equipo y materiales de laboratorio, asi como elaborar medio de culivo" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Practica Nº 1 "Operar Equipo y materiales de Laboratorio, así como medios de cultivo"
Etapa pre-analitica.
-Practica Nº 1 "Elaborar medio de cultivo"
-Practica Nº 2 " Esterilización de medios de cultivo"
-Practica Nº 3 "Siembras con estría en medios de cultivo"
-Practica Nº 4 "Observacion de desarrollo de microorganismos en medio de cultivo, lectura de colonias"
-Practica Nº 5 "Flotis para tincion"
-Practica Nº 6 "Tincion de Gram"
-Practica Nº 7 "Observacion microscopica en objetivo 100x con aceite de inmersión
-Practica Nº 8 "Prueba de reacciones febriles para prueba de aglutinación en serología
-Practica Nº 9 "Prueba de aglutinación en sangre fresca, utilizando tubo con anticuagulante"

Clase Nº1 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Enfoque 100x
Enterobacterias:
-Escherichia Coli
-Salmonella
-Proteus
-Brusella
Pruebas de aglutinacion:
-Salmonella
-Proteus
-Brusella

Elaborar medio de cultivo:










Frotis:

Tincion de Gram: Alcohol, cetona, cristal, sacranina, yodo lugol.



3er Parcial 2Lm

3er Parcial

viernes, 8 de mayo de 2009

Practica Nº 3 "Pipeteo" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Practica N° 3 “Pipeteo”
*Índice:

-Objetivo de la práctica
-Introducción
-Desarrollo de la práctica
-Bitácora
-Conclusión

*Objetivo:
Esta práctica tiene como objetivo, que nosotros los alumnos pongamos en práctica los conocimientos anteriormente vistos y aprendamos a medir cantidades en volumen, así como el manejo adecuado de pipetas, probetas y matraces, ya que será lo que posteriormente utilizaremos mas adelante

*Introducción:
En esta práctica llamada “Pipeteo” realizaremos algunos procedimientos que nos sirven para mejorar las perfecciones de medidas y como utilizar las pipetas volumétricas y automáticas, así como saber medir bien los mililitros y aprender a pipetear sustancias que en este caso fue agua.

*Material:
-Probeta graduada 25ml
-Probeta graduada 100ml
-Matraz erlenmeyer 250ml
-Pipeta Pasteur
-Pipeta graduada volumétrica 10ml
-Pipeta volumétrica 5ml
-Pipeta automática
-Pipeta volumétrica de 1000ml
-Lóbulo
-Agua

*Marco teorico
-Procedimiento: Cada uno de los integrantes realizara la misma actividad, se pipeteara con las 5 pipetas entregadas y se colocara la muestra del liquido en la probeta, se pipetearan desde 1ml hasta 5 ml. Una vez hecho eso se colocara una gota de cada pipeta en una caja de petri y se compararan sus tamaños.

-Nota: Pipeta Pasteur, se aprieta el lóbulo para succionar el agua contenida en el matraz Erlenmeyer hacia la probeta, al utilizarla 5 veces se llego a los 3 ml

-Pipeta volumétrica ( 1ml): Se succiona el agua con la boca, después lo colocamos en la probeta graduada y comprobamos que aspira mas realmente 1 ml de agua

-Pipeta volumétrica (5ml): Se succiona con la boca, sostenemos con el menisco, soltamos y ponemos el agua en la probeta comprobando que si son 5ml exactos.
-Pipeta graduada (10ml): Se aspira el agua, de igual modo sostenemos con el menisco hasta el 10, luego colocamos el líquido en la probeta donde comprobamos que son 10 ml

-Comparación de gotas:
1.- Pipeta Pasteur (gota mas pequeña)
2.- Pipeta automática en 10micro litros (gota mediana pequeña)
3.- Pipeta graduada de 1ml (gota mediana)
4.-Pipeta volumétrica 5ml (gota mediana, grande)
5.- Pipeta graduada volumétrica 10ml (grande)

*Bitácora:
-Colocación del equipo de bioseguridad………………………..5min
-Explicación del profesor…………………………………………10min
-Recolección de material…………………………………………5min
-Realización de practica………………………………………….1hora
-Retirar equipo de bioseguridad………………………………..5min


*Conclusión:
Esta practica como todas las demás ya realizadas son importantes pues aprendemos nuevas cosas que nos serán de gran ayuda mas adelante, en este caso, el pipeteo de sustancias asi como aprender a utilizar correctamente los materiales como las pipetas y saber medir correctamente las cantidades.

Estructura Practica Nº 3 Pipeteo 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Practica Nº 3 “Pipeteo”

-Nota
Iniciamos nuestra práctica con la utilización de equipo de cristalería en el término de pipetas graduadas para realizar la actividad de medición de líquidos, de un mililitro hasta 5mm.
En la cubeta para rotor de equipo científico llamado monarca se hace un vaciado en cifra de microlitos (20 mc) y se utiliza la pipeta automática graduada que en forma manual aplicamos la graduación.
Con la misma pipeta graduada se toma una muestra de líquido y se deposita en el v. de reloj y se compara contra la cubeta del rotor.
Se comparan las medidas con todas las pipetas y todos los integrantes de la mesa deben realizar la actividad del pipeteo.

Lamina de cristal para pruebas inmunológicas (serologicas)
-Característica: es escavada y algunas otras solo tienen un circulo plástico para contener el liquido que se deposita en el.
-La pipeta pasteur la ocupamos por el ovulo de extracción, se utiliza para el punteo de la lamina de cristal.
-Borrador de la actividad de cada práctica

Investigacion: Pie de Rey 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Pie de Rey

Instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, desde centímetros hasta fracciones de milímetros (1/10 de milímetro, 1/20 de milímetro, 1/50 de milímetro). En la escala de las pulgadas tiene divisiones equivalentes a 1/16 de pulgada, y, en su nonio, de 1/128 de pulgadas.
Es un instrumento sumamente delicado y debe maniobrarse con habilidad, cuidado y delicadeza, con precaución de no rayarlo ni doblarlo (en especial, la coliza de profundidad).


El primer instrumento de características similares fue encontrado en un naufragio en la isla de Giglio, cerca de la costa italiana, datado en el siglo VI a.C. Aunque considerado raro, fue usado por griegos y romanos Durante la Dinastía Han (202 a.C. - 220 d.C.), también se utilizó un instrumento similar en China, hecho de bronce, hallado con una inscripción del día, mes y año en que se realizó.


Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués Pedro Núñez (1492-1577) —que inventó el nonio o nonius—, el origen del pie de rey. También se ha llamado pie de rey al vernier, porque hay quien atribuye su invento al geómetra Pierre Vernier (1580-1637), aunque lo que verdaderamente inventó fue la regla de cálculo vernier, que ha sido confundida con el nonio inventado por Pedro Núñez.
En castellano, se utiliza con frecuencia la voz nonio para definir esa escala.

El calibre moderno con nonio y lectura de milésimas de pulgada, fue inventado por el americano Joseph R. Brown en 1851. Fue el primer instrumento práctico para efectuar mediciones de precisión que pudo ser vendido a un precio asequible


Cuestionario 2da Unidad 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Cuestionario: Segunda unidad

1.- Es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués que se llama:
Pedro Nuñez

2.- En qué año se le atribuye el pie de rey al cosmógrafo y matemático portugués.
1514

3.- También se ha llamado pie de rey al:
vernier

4.- En que año se le atribuye el pie de rey al geómetra pedro Vernier.
1631

5.- ¿Qué otro nombre recibe el origen del pie de rey?
Nonio o nonius

6.-Ponga el número y nombre correspondiente de la figura de medición


1.-Mordazas para medidas externas.
2.-Mordazas para medidas internas.
3.-Coliza para medida de profundidades.
4.-Escala con divisiones en centímetros y milímetros.
5.-Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada.
6.-Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido.
7.-Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido.
8.-Botón de deslizamiento y freno
.

Fuentes de consulta: http://es.wikipedia.org/wiki/Calibre_(instrumento)

Investigacion "Salmonella, Brucella y Proteus 0x19" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Salmonela
-Reino: Bacteria.
-Filo: proteobacteria.
-Clase: Gamma Proteobacteria.
-Orden: Enterobacteriales.
-Familia: Enterobacteriaceae
-Genero: Salmonela
- Produce sulfuro de hidrogeno (H2S), fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa y no producen ureasa.
Su tamaño oscila entre 1 y 3 µm de longitud y entre 0.5 y 0.7 µm de diámetro.

Brucella
-Reino: Bacteria.
-Filo: Proteobacteria.
-Clase: Proteobacteria alfa
-Orden: Rhizobiales
-Familia: brucellaceae.
-Causa de las Brucelosis, que es transmitida por la ingestión de comida infectada, su tamaño es de (0.5-0.7 por 0.6-10µm)

Proteus Ox19
-Reino: Bacteria.
-Filo: Proteobacteria.
-Clase: Gama proteobacteria.
-Orden: Enterobacteriales.
-Familia: Enterobacteriaceae.
-Genero: Proteus.
-Tienden a ser organismos no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa.

Practica Nº 2 "Pesos y medidas" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Practica N°2 Pesos y medidas


*Índice
-Objetivo
-Introducción
-Desarrollo de la práctica
-Bitácora
-Conclusión
-Investigación de “pesos y medidas”
-Fichas bibliograficas


*Objetivo:

En esta práctica, aprendemos a usar y manejar adecuadamente la balanza granataria, teniendo como finalidad aprender a pesar y conocer las medidas de los diversos instrumentos indicados, asi como dar el primer paso para la preparación de cultivos.

*Introducción:

Esta práctica se realizara con el fin de conocer la medida de los pesos correspondientes a los instrumentos dados. Cada unos de ellos debe colocarse en la balanza granataria, la cual debe estar balanceada, para que el resultado de cada uno de los instrumentos sea el correcto.
Al finalizar de pesar los instrumentos se realizaran los mismos procedimientos pero con el fin de conocer los pesos del azúcar y sal, para dar como ya se menciono en el objetivo, el primer paso en la preparación de cultivos.

*Marco teórico:

Material:
-Azúcar
-Sal
-Vaso de pp. 50ml
-Vaso de pp. 500ml
-Laminilla de cristal
-Caja de petri
-Probeta
-Tubo de ensaye
-Vidrio de reloj
-Cristalizador
-Pipeta graduada 5ml
-Pipeta volumétrica
-Pipeta Pasteur
- Pipeta de Sali
-Manguera con boquilla
-Espátula
-Pipeta graduada

La practica consiste en pesar en la balanza los materiales indicados. Para ello primeramente debemos pedir el material necesario, asegurarnos si la balanza granataria esta balanceada y enseguida empezar a pesar los instrumentos. Cada uno de los integrantes del equipo deberán pesar los instrumentos y anotar debidamente las observaciones necesarias:
-Pasos
1.- El alumno deberá llegar puntualmente portando su equipo de bioseguridad
2.- Se asegura si el material esta en buenas condiciones y si la balanza granataria esta balanceada 3.- Colocar cada unos de los instrumentos en la balanza granataria y obtener su peso
4.- Realizar el mismo procedimiento con los demás instrumentos
5.- En el caso del azúcar y sal, este se pesara junto con el vaso de pp. 50ml y lo que resulte sera restado a la cantidad del peso del vaso de pp. De 50 ml.
6.- Por ultimo se registraran los datos obtenidos, se limpiaran los materiales usados y se guardaran en orden

Pesos y medidas
-Vaso de pp. 50ml: 28gr
-Vaso de pp. 500ml: 116gr
-Laminilla de cristal: 53.6
-Caja de petri: 71gr
-Probeta: 145gr
-Tubo de ensayo: 8.6gr
-vidrio de reloj: 17.9gr.
-Cristalizador: 55.4gr
-Pipeta graduada 5ml: 21.8
-Pipeta volumétrica: 22.6ml
-Pipeta Pasteur: 5.6 gr
-Pipeta de Sali con manguera con boquilla: 7.3gr
-Espátula: 49.5gr
-Pipeta graduada: 3.4gr
-Peso de agua destilada: 5.4gr
-Peso de sal: 36.7gr
-Peso de 30 ml de azúcar: 25.2gr
-Agar de hierro de kligler: 4.42gr
52---->1000ml
X ---->85ml
X=(52gr)(85ml)/1000ml


X=4.42gr


*Bitácora:
-Colocación de equipo de bioseguridad……………………………….5min.
-Toma de medida de los materiales……………………………………50min
-Apuntes…………………………………………………………………..5min
-Retirar equipo de bioseguridad……………………………………….5min.

*Conclusión:
Esta practica se realizo con la finalidad de aprender a utilizar la balanza granataria, al igual que conocer los pesos y medidas de los instrumentos que estaremos llevando a lo largo de esta especialidad y con un mayor objetivo, aprender a dar el primer paso en preparación de los medios de cultivo.
Fue una buena experiencia, aunque aun nos falta aprender mucho mas y a controla nuestro pulso.


*Breve Investigación “Pesos y medidas”
El sistema internacional es el sistema que utilizan los científicos del mundo entero. Se adopto por la conferencia general de pesos y medidas.
Hoy en día este es el sistema que emplea la mayoría de los países.
-Medidas de longitud:
1pulgada-->2.54cm
1pie-->30.48cm
1yarda-->o.9144m
1milla-->1.606km

-Medidas de peso
1onza-->28.35gr
1cuarto-->0.9463Lts
1galonà3.785Lts


Fuente de consulta:
www.becariosbarrie.org/supervivencia_en_uk/medidas.uk
www.superchicos.net/pesosymedidas.htm

Bacterias presentes en los medios de cultivo 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Bacterias en los medios de cultivo
Cuando se desea cultivar bacterias, es necesario tomar en cuenta los componentes nutritivos, sales, humedad y las condiciones físicas como lo son el pH, la luz y temperatura
Una bacteria puede alterar el pH del medio de cultivo como resultado de la degradación de sustancias producidas por la propia bacteria
Por otro lado, las bacterias en su conjunto presentan una respuesta variable al oxigeno libre clasificándose en cinco grupos:
*Aeróbicas: Bacterias que crecen en presencia de oxigeno libre.
*Anaeróbicas: Bacterias que crecen en ausencia de oxigeno libre
*Anaeróbicas facultativas: Bacterias que crecen en presencia como en ausencia de oxigeno libre.
*Aerotolerantes: Bacterias que pueden tolerar el oxigeno y crecen en su presencia aun cuando no lo utilizan
*Microaerofilas: Bacterias que crecen en presencia de de pequeñas cantidades de oxigeno libre.

Cada bacteria tiene una temperatura óptica de crecimiento clasificándose en los sig. Grupos:
*Psicrofilas: Desarrollan a 0° C o menos su temperatura optima es alrededor de los 15°C
*Mesófilas: crecen mejor entre 25 y 40 °C
*Termófila: crecen mejor entre 50 y 75°C
*Hipertermofilas: crecen próximas a 100°C

Fuentes de consulta
http://www.biologia.edu.ar/microgeneral/tp4.pdf
http://www.fuc.unlp.edu.ar/sitios-catedras/96/material/medios de cultivo09

Actividad "Agar sangre" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

-Realizar problemas correspondientes a medios de cultivo (reactivo)
1.-Anotar el nombre del medio de cultivo que nos facilita, con todos los datos visibles en su etiqueta.
2.- Leer cuidadosamente las indicaciones que contiene el bote de medio de cultivo
3.- Rehidratar el contenido en gr. Para 1000ml del cual deberá ocupar un porcentaje para rehidratar en 250 ml, 165ml. y 138ml
4.- Las operaciones deben de ser con números básicos como suma, resta, multiplicación y división para poder ejecutar regla de tres.
5.- Tema de investigación: Investigar tipo de bacteria que crece en los medios de cultivo habilitados.

Ejercicio:
1.- Anotar nombre completo y datos visibles
- Base de agar sangre
- Formula gr. Por Litro:
-Agar……………………………………….150
-Cloruro de sodio…………………………..5.0
-Infusión de músculo caroliaco…………….10.0
- Preptona…………………………………...10.0

pH 7.3 +/- 0.2

Registro Nº 0123R84 SSA
Contenido Neto: 450gr.
Lote Nº: 5957123
Caducidad: 05-Feb-07
Catalogo Nº 1031-A

2.- Rehidratar el contenido en gr. Para 1000ml. del cual deberá ocupar un porcentaje para rehidratar en 250ml, 175ml y 138ml

40---->1000ml
X ---->250ml

X= (40gr)(250ml)/1000ml

X= 10gr


40---->1000ml
X ---->175ml

X= (40gr)(175ml)/1000ml

X= 7gr.



40------>1000ml
X ------>138ml

X= (40gr)(138ml)/1000ml

X= 5.52 gr.

Apunte "Recuento de eritrocitos" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Recuento de eritrocitos:
Observe que en la grilla de la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul. Ten en cuenta que la grilla central tiene 25 cuadrados de 1mm x 1mm de área y 0.10 mm de profundidad. El factor de dilución es por tanto de 1:200. Convierte el número de glóbulos rojos contados en 5 cuadrados a nº glóbulos rojos/µl. (1 µl (microlitro) = 1 mm3 )

La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x. Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente..
Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha..
El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:


Mujeres:
3.9-5.6 millones/µl
Hombres:
4.5-6.5 millones/µl



TÉCNICAS DE CONTAJE CELULAR
Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el porcentaje de éstas que son viables.Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos (cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el "Cell Coulter" de la empresa Beckman-Coulter

El principio del contador celular se basa en la medida de los cambios en la resistencia eléctrica que se producen cuando una partícula no conductora en suspensión en un electrolito atraviesa un pequeño orificio. Como se puede ver en el esquema, una pequeña abertura entre los electrodos es la zona sensible a través de la que pasan las partículas que se encuentran en suspensión. Cuando una partícula atraviesa el orificio desplaza su propio volumen de electrolito. El volumen desplazado es medido como un pulso de voltaje. La altura de cada pulso es proporcional al volumen de la partícula. controlando la cantidad de la suspensión que circula a través del orificio es posible contar y medir el tamaño de las partículas. Es posible contar y medir varios miles de partículas por segundo, independientemente de su forma, color y densidad.
En la unidad de Citometría de flujo y Microscopia Confocal de los Servicios Científico-Técnicos de la Universidad de Barcelona se dispone de contadores celulares.
Sin embargo, es posible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos. Nos basta con una cámara de contaje celular, por ej. la cámara de Neubauer, y un microscopio.
a medir. El dispositivo presenta unas señales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo el microscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puede determinar la densidad de partículas en la suspensión de origen.
La cámara de Neubauer es una cámara de contaje adaptada al microscopio de campo claro o al de contraste de fases. Se trata de un portaobjetos con una depresión en el centro, en el fondo de la cual se ha marcado con la ayuda de un diamante una cuadrícula como la que se ve en la imagen. Es un cuadrado de 3 x 3 mm, con una separación entre dos lineas consecutivas de 0.25 mm. Así pues el área sombreada y marcada L corresponde a 1 milimetro cuadrado. La depresión central del cubreobjetos está hundida 0.1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se cubre con un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0.1 milímetro, y el volumen comprendido entre la superficie L y el cubreobjetos es de 0.1 milímetro cúbico, es decir 0.1 microlitro.
Si contamos las cuatro áreas sombreada (L) observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración en la suspensión celular será :
concentración en la suspensión (células / mL) = 10000 (x/4)
En la imagen puedes observar el aspecto de una de las regiones marcadas como L y que en el microscopio se ven como una cuadrícula de 16 pequeños cuadrados de 0.25 milímetros de lado. Esta imagen ha sido tomada empleando un microscopio invertido de contraste de fases.
Existen numerosos modelos de cámaras de contaje celular adaptadas a su uso en microscopía. En la imagen puedes observar una cámara de Neubauer doble, como las que usas en el laboratorio de prácticas.

Para determinar la viabilidad celular se emplean diferentes métodos. El más común es el de tinción con azul tripán. El azul tripán es un coloide que se introduce en el interior de las células que presentan roturas en la membrana. Así pues las células que aparecen en la imagen, claramente de color azul, son consideradas no viables. Asimilar células blancas, por exclusión, a células viables es un error pues por este método se sobrevalora la viabilidad de las células en la suspensión, determinando como inviables sólo aquellas con la membrana rota. Existen otros métodos de determinación de la viabilidad celular como el más preciso de la tinción con ioduro de propidio

1. se aseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se coge entre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante a través de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril.
2. Se deshecha la primera gota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de dilución perfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarse la pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros). Hay que evitar la entrada de burbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir el enrasado.
3. A continuación se toma con la pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así, la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al 1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de la pipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizado la pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquido de Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200).
4. Tomamos la pipeta (o el tubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de la goma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotas por corresponder al líquido que estaba en el capilar.
5. Se adapta un cubreobjetos sobre una cámara cuentaglóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno de los lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículo de la misma.
6. Una vez preparada la cámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos en reposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luz débil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia al fuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadrados pequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento se procede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada y alcohol-éter sucesivamente.
7.El volumen de sangre en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados.
Con cámara de NEUBAUER: Superficie de 1 cuadrado grande (1/20 mm de lado):
Volumen de un cuadrado grande (1/10 mm de profundidad):
Se utilizan para calcular, mediante el uso del microscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias…) por unidad de voluimen de un líquido.
La cámara está constituida por una placa base de vidrio especial pareciso a un porta, su parte central se encuentra separada de los extremos por unas ranuras. en ella se encuentran las cuadrículas de recuento.
La fórmula de contaje es: partículas/mm3= partículas contadas.
Clases de cámaras:
- Neubauer improved: Es el más utilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)
- Neubauer: La diferencia es el cuadro grande central.
- Thoma: Se utiliza solo para el recuento de eritrocitos.
- Fuchs-Rosenthal: Se utiliza habitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquido sinovial…)





Investigacion "Pruebas serologicas" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Pruebas serológicas

Se denomina pruebas serológicas a las realizadas sobre el suero, uno de los componentes de la sangre, para detectar anticuerpos.
De este modo existen análisis serológicos para detectar distintos tipos de enfermedades:
Estas a su vez se dividen en dos: no-treponémicas y treponémicas.

Las pruebas no treponémicas son usadas para despistaje, son económicas y, también, sirven para evaluar la eficacia del tratamiento.

Las pruebas treponémicas detectan anticuerpos y Se le utiliza para verificar cuando las pruebas no-treponémicas son reactivas o como pruebas confirmatorias cuando el cuadro clínico es sugestivo, pero la serología es negativa, como ocurre en la sífilis tardía.



Pruebas Febriles
Las pruebas febriles (PF) son pruebas serológicas que se han empleado para diagnosticar tifoidea, paratifoidea, ricketsiosis y brucelosis; se basan en aglutinación con extractos bacterianos de los antígenos O y H de Salmonella tiphy, antígeno H de Salmonella Paratiphy, proteusox19 y antígenos contra Brucella abortus.

Pruebas de embarazo
Prueba que mide una hormona llamada gonadutropina corionica humana (gch), producida durante el embarazo. Esta hormona aparece en la sangre y en la orina de las mujeres embarzadas hasta 10 dias de la concepcion.

Pruebas de VDRL
Examen de tramizaje para sifilis que los nticuerpos llamados reagias, que pueden ser producidos por el treponema Pallidum. Sin embargo el cuerpo no siempre produce reagina especificamente en respuesta a la bacteria de la sifilis, por lo que el examen no siempre es presiso.



Fuentes de consulta
http://sisbib.unmsm.edu.pe/BVrevistas/dermatologia/v10_sup1/pruebas_lab.htm
http://www.monografias.com/trabajos5/sida/sida2.shtml
http://foros.emagister.com/tema-reacciones_febriles-13098-384748-1.htm

Investigacion "Camara de Neubauer" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Función de la Cámara de Neubauer.
La Cámara de Neubauer es un instrumento utilizado en cultivo celular para realizar conteo de células en un medio de cultivo líquido. Consta de dos placas de vidrio, entre las cuales se puede alojar un volumen conocido de líquido. Una de las placas posee una grilla de dimensiones conocidas y que es visible al microscopio óptico.

Para contar las células de un cultivo líquido, se agrega una gota de este entre estas dos placas y observar al microscopio óptico la cantidad de células presentes en un campo determinado de la grilla.


Con base en la cantidad de células contadas, conociendo el volumen de líquido que admite el campo de la grilla, se calcula la concentración de células por unidad de volumen de la solución de medio de cultivo inicial.


Obtenido de
http://es.wikipedia.org/wiki/C%C3%A1mara_de_Neubauer

Investigacion: "Celulas que contienen los vegetales" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

Células que contienen los vegetales.
El bulbo de la cebolla esta compuesto por células que tienen un tamaño relativamente grande y poseen formas alargadas u ovaladas


*Células que contiene el tomate.
Los cromoplastos son un tipo de plastos organubs propios de la célula vegetal que almacenan los pigmentos a los que se deben los colores anaranjados o rojos de flores, raíces o frutos.
-Cuando son rojos se denominan rodoplastos.

*Células presentes en el repollo.
Los cloroplastos son organulos celulares que en los organismos eucariontes fotosintetizadores se ocupan de la fotosíntesis. Específicamente se usa para designar a los plastos verdes, algas verdes o plantas

Practica Nº 1 "Microscopio" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

*INDICE.
-Objetivo.
-Introducción.
-Marco teórico
-Bitácora
-Recuadro de observaciones personales.
-Conclusión.
-Ficha Bibliográfica.

-Objetivo:
El objetivo de esta primera práctica era aprender a enfocar el microscopio. Por lo que primeramente colocamos una cámara de Neubauer.Para enfocar el microscopio estuvimos jugando con las pinzas para la platina y los tornillos macro y micrométrico hasta que conseguimos enfocarlo. Y nos dimos cuenta de que ya estaba enfocado porque podíamos observar unos cuadritos.
-Introducciòn:
Para lograr un enfoque del microscopio, primeramente tendremos que manipular las pinzas para la platina, jugar con ellas hasta lograr el enfoque perfecto. Y utilizaremos el objetivo 10x.También vamos a mover los tornillos macro y micrométrico hasta lograr observar una cuadricula. Muchos pequeños cuadritos perfectos.Después de eso observaremos una muestra de cebolla y registraremos lo que hemos observado. Repetiremos el mismo con una muestra de tomate y con una muestra de vegetal (hoja) en este caso es repollo.Al terminar de observar todas las muestras, realizaremos dibujos, bitácoras, y apuntes de nuestras observaciones en las prácticas.

-Marco teorico:
Materiales:
Microscopio compuesto
Cubre y porta objetos
Cámara de Neubauer
Cebolla
Tomate
Repollo

Procedimiento:
Se coloca la cámara de Neubauer en la platina y se comienza a mover las pinzas para la platina y los tornillos macro y micrométrico hasta conseguir un perfecto enfoque.Repetir procedimiento con la muestra de cebolla, tomate y repollo. Al tener el perfecto enfoque lo que observe fueron muchos pequeños y perfectos cuadritos. Tales como en una lámina cuadriculada.

Muestra de cebolla: Lo que observe con la cebolla una vez enfocado el microscopio, se veían muchos círculos deformes como gelatinosos y color transparente, uno encimado del otro.

Muestra de tomate: Lo que pude observar aquí, fue como la figura de una estrella, un poco deforme de color rojo bajito.
Muestra de repollo: Al colocar la muestra de repollo sobre el porta y cubreobjetos y tenerlo bien enfocado pude observar que parecía como gel, de color verde bajito y se podía observar como una veredita en medio.


Observacion del Tomate a través del microscopio








Observacion de la cebolla enfocada en el microscopio









Bitacora:
-Colocar equipo de bioseguridad 15 minutos
-Enfoque grupal del microscopio 30 minutos
-Enfoque por Vanessa 3 minutos
-Enfoque por Carolina 3 minutos
-Enfoque por Cristian 6 minutos
-Enfoque por Jessica 5 minutos
-Observación de cebolla 3 minutos
-Obervacion de Tomate 5 minutos
-Observaciones de repollo 2 minutos
Conclusion:
En esta primera práctica aprendimos a enfocar el microscopio compuesto, moviendo las pinzas para la platina al igual que los tornillos macro y micrométrico hasta obtener un perfecto enfoque.
Como parte de la práctica observemos muestras de vegetales: Cebollas, tomate y repollo.
Fue muy interesante ver como esta constituido, ya que es algo que el ojo humano por si solo no puede captar.Sin duda este era el primer paso para poder realizar las siguientes prácticas.
Ficha bibliografica:
-Apuntes del laboratorio de Química.
-Observaciones personales de la práctica.

Investigacion: Moleculas inorganicas 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

*Moléculas inorgánicas
Se denomina compuesto inorgánico a todos aquellos compuestos que están formados por distintos elementos pero en los que su componente principal no siempre es el carbono, siendo el agua el más importante.
Entre los compuestos inorgánicos más importantes de los seres vivos tenemos el agua y las sales minerales que abundan en el suelo, y el dióxido de carbono, el cual exhalamos nosotros cuando respiramos.
-Moléculas inorgánicas: Agua, sales minerales y gases.
-Ejemplos de compuestos inorgánicos:
-Cloruro de sodio
- Agua
- Amoniaco
- Dióxido de Carbono

-El cloruro: Es necesario para la elaborcion del acido clorhídrico del tejido gástrico.
-Sodio: Interviene en la regulación del balanceo hídrico favoreciendo la retención de agua.
-Potasio: Actúa en el balanceo hídrico favoreciendo la eliminación de agua.
-Yodo: Necesario para que la glándula tiroides elabore la secreción hormonal que regula el metabolismo.
-Hierro:
Imprensindible para la formación de la hemorragia de los glóbulos rojos.
-Calcio y fósforo: Constituyen la parte inorgánica de los huesos
-CO2: Fundamental para el proceso de la fotosíntesis

Estructura de practica Nº 1 "pesos y medidas" 2Lm Roldàn Gòmez Jessica Elizabeth

-Estructura de la paractica
1.-Portada
2.-Objetivo
3.- Introducción
4.- Índice
5.- Marco teórico
6.- Conclusión
7.-Fichas bibliograficas
8.-Glosario

-Investigación
*Unidad I
I- Microscopio (enfoque)

*Unidad II
II- Pesos y medidas.

*Pesos y medidas
El alumno debe llegar puntualmente al laboratorio de análisis clínicos- químico y portando su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes y cubre boca)

-Instrucciones a desarrollar dentro del laboratorio clínico
Materiales que se ocuparan en esta práctica:
1.-Pipeta graduada, volumétricas
2.- Buretas
3.- Probetas
4.- Vaso de precipitado
5.- Matraz erleymeyer
6.- Pipeta Pasteur
7.- Pipeta de Sali
8.- Pipeta de Thomas

Dentro del procedimiento se va llevar a cabo la actividad de pesar y medir los materiales de cristalería, asi como, las sustancias, solventes y otro tipo de reactivos que se solicitan.
Los pesos y medidas deben de ser en forma ordenada y para ello se ocupa una balanza granataria, donde se depositaran los materiales. Ya indicados de forma individual registrando los pesos de cada uno.
Una vez teniendo los pesos de los materiales, se les aplicara un reactivo cualquiera, ya sea sólido, en polvo o liquido y se registrara el peso en el reactivo y así poder llegar a ocupar nuestro sistema métrico decimal y anglosajón.
El alumno deberá comparar el peso de un mm de agua destilada contra el peso de 1mm de agua de la llave y para ello ocupara pipetas graduadas.
Introduzca la punta de la pipeta hasta el fondo del recipiente que contiene la solución o solvente y succionen hasta que el liquido hacienda en el interior de la pipeta hacia arriba en la marca superior, la succión la pueden hacer con la boca si es agua y con perillas de hule si son líquidos corrosivos.
En las pipetas de Sali y de Thomas se requiere utilizar una manguera especial con boquilla la cual se debe succionar cuidadosamente hasta la marca que contiene y registramos la medida del producto introducido en ellas que es en µl.
Controle la descarga de las pipetas graduadas y volumétricas con el dedo índice de la mano, para saber si ya esta la cantidad exacta y pueda observar el menisco que se forma.
Realiza 5 determinaciones con pipetas de diferente capacidad y para comprar los resultados, vacié el contenido de la pipeta en una probeta que tenga capacidad de recibir el líquido que contiene la pipeta, lave la pipeta o pipetas y enjuague con agua destilada, colóquela en un porta pipetas o gradillas para que se estile y seque.
Antes de ocupar sus materiales de cristalería cualquiera que sea, se deben de revisar cuidadosamente y verificar que no estén bretados, estrellados o en mal estado, para ello deben de llenar una forma de laboratorio de solicitud de materiales.